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SIGMA胎牛血清|F8687-500ml
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更新時間:2023-12-21

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SIGMA胎牛血清|F8687-500ml

名稱:胎牛血清

貨號:F8687-500ML

品牌:SIGMA

干細胞是在所有多細胞生物中發現的原始細胞。

它們保留了通過有絲分裂細胞分裂來更新自身的能力,并且可以分化成多種專門細胞類型。

哺乳動物干細胞的三大類是:源自胚泡的胚胎干細胞,在成人組織中發現的成年干細胞和在臍帶中發現的臍帶血干細胞。

在發育中的胚胎中,干細胞可以分化為所有專門的胚胎組織。

在成年生物中,干細胞和祖細胞可作為人體的修復系統,補充專門的細胞。

由于干細胞可以通過細胞培養而生長并轉化為具有與諸如肌肉或神經等各種組織的細胞一致的特性的特化細胞,因此提出了將其用于醫學治療中。

特別是,胚胎細胞系,通過治療性克隆產生的自體胚胎干細胞以及來自臍帶血或骨髓的高可塑性成年干細胞被吹捧為有前途的候選者。

醫學研究人員認為,干細胞療法有可能從根本上改變人類疾病的治療方法。

已經存在許多成人干細胞療法,尤其是用于治療白血病的骨髓移植。

在干細胞研究中,有時需要體外培養和分析細胞。細胞要養好,就要用好血清,如Ausbian品牌特級進口胎牛血清,它的內毒素小于3Eu/ml,使細胞更健康,客戶做實驗更加順利。

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12、使用胰蛋白酶加入EDTA是為什么?

EDTA用來螯合游離的鎂離子和鈣離子,以便保持抑制胰蛋白酶的活性。建議胰蛋白酶處理細胞前,用EDTA清洗細胞,以消除來自培養基中所有的二價離子。

13、可否使用與原先不同的培養基?

不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應的細胞培養基,若驟然使用和原先提供之培養條件不同之培養基,細胞大都無法立即適應,易造成細胞狀態不好,最終造成細胞無法存活。

14、可否使用與原先不同的血清種類?

不能。血清是細胞培養上一個極為重要的營養來源,所以血清的種類和品質對于細胞的生長會產生極大的影響。來自不同物種的血清,在一些物質或分子的量或內容物上都有所不同,血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。

15、細胞為何生長不均勻?

細胞傳代后放入培養箱沒有搖勻,或者放入時搖勻,但在細胞貼壁前,又移動了培養瓶,頻繁開關培養箱引起的振動或者培養瓶中培養液過少,培養箱擱板表面不平整,這些因素會導致16、購買的細胞死亡或細胞存活率不佳

研究人員在細胞培養時出現存活率不佳,常見原因可歸納為:培養基使用錯誤或培養基品質不佳。血清使用錯誤或血清的品質不佳。運輸過程對細胞有嚴重影響。解凍過程錯誤。冷凍細胞解凍后,加以洗滌細胞和離心。懸浮細胞誤認為死細胞。培養溫度使用錯誤。細胞置于–80°C太久。

17、細胞抱團怎么處理?

一些懸浮細胞抱團生長是正常現象,大部分懸浮細胞在細胞密度很高的情況下,很可能會出現部分細胞抱團生長的現象,聚團細胞很容易死亡并演化成絮狀物,殃及周圍的懸浮細胞,因此在培養懸浮細胞時需控制好細胞密度。如果出現了細胞團,可以通過細胞篩去掉部分較大的細胞團,也可以嘗試一下方法:將細胞懸液收集到15 ml離心管中,靜置20 min左右,小心取上層細胞上清培養(該方法只能去除部分較大的細胞團)

18、細胞內有空泡,是否是正常現象?

部分細胞本身存在一定的空泡(HepG2Ishikawa及一些耐藥株等),這個是正常現象。如果只有少數細胞有內出現極少空泡,則很可能是細胞狀態不佳,可以通過調整血清濃度,控制消化,控制傳代比例及時間等方法來調整細胞狀態;如果大部分細胞出現空泡,且單個細胞內空泡數目偏多,則可能細胞代次較高,細胞老化所致,需更換代次較早的細胞。

19、細胞傳兩代后開始逐漸死亡的原因

很可能是培養體系不適合細胞(未使用推薦的培養體系);或者消化過度,對細胞有嚴重影響;或者是傳代比例不合適(具有密度依賴性的細胞,傳代太稀;或者生長較快的細胞,傳代較密,細胞嚴重堆疊生長)

20、細胞生長逐漸變慢是什么原因?

細胞增殖變慢有以下原因:1. 消化過度 2. 傳代過密 3.細胞營養不良 4.細胞頻繁傳代 5.細胞狀態不佳或老化 6.細胞存在污染。

21、培養細胞時應使用5%10%CO2?

一般培養基中大都使用HCO3-/CO32-/H+作為pH的緩沖系統,而培養基中NaHCO3的含量將決定細胞培養時應使用的CO2濃度。當培養基中NaHCO3含量為每公升3.7 g時,細胞培養時應使用10% CO2;當培養基中NaHCO3為每公升1.5 g時,則應使用5% CO2培養細胞。

22CO2培養箱之水盤如何保持清潔?

定期(每周一次)更換水盤里面的水,水盤的水必須使用無菌蒸餾水或無菌去離子,水盤中可添加1%硫酸銅以預防霉菌污染。

23、細胞接種密度多少合適?

依照細胞株基本數據上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細胞數太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長的一個重要原因。按照我們的經驗:一般倍增時間24 h內的細胞,傳代比率1:6-1:12為宜,倍增時間24-48 h的細胞,傳代比率1:3-1:8為宜,倍增時間超過48h的細胞, 傳代比率1:2-1:4為宜。

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24、培養中常出現一些黑點,是污染嗎?

首先肉眼觀察培養液是否變渾濁,如果變渾濁,基本可以確定是污染;如果肉眼觀察培養液沒有變渾濁:在顯微鏡下觀察黑點大小和形狀是否規則,是否運動,是做布朗運動還是呈直線型快速移動。如果黑點大小不規則,做布朗運動,黑點可能是細胞碎片(可能是細胞狀態不佳或者消化過度引起的),也可能是血清反復凍融產生的蛋白沉淀引起的,也可能是細胞的代謝產物。如果黑點大小一致,快速移動,很可能是細菌污染。

25、如何預防細胞培養中黑點的產生?

掌握細胞傳代的最佳時機,不要細胞長老了再傳代;掌握好消化時間,防止消化過度產生細胞碎片;減少血清等試劑的凍融次數;將培養液的PH調到最佳;嚴格控制水質和器皿的清潔。26、黑點已經產生了,如何進行處理?

如果判定黑點是污染,請及時將細胞處理后丟棄。其他情況,可參照以下進行:

如果是懸浮細胞:收集細胞上清慢速離心(500-600 rpm/min5-6 min)并更換新的培養瓶;如果是貼壁細胞:將細胞用PBS2-3遍,洗的時候,輕輕拍打培養瓶,讓貼壁不牢的碎片和顆粒脫落,再棄去PBS,消化時先加低濃度的胰酶如0.05%胰酶消化1 min左右,讓細胞間隙中的顆粒和碎片脫落下來,去掉低濃度胰酶,然后正常消化細胞,將收集的細胞懸液慢速離心(500-600 rpm/min5-6 min)并更換新的培養瓶,并可以嘗試適當增加血清濃度進行培養。

27、培養用dish,flask是否相同?

不同廠牌的dishflask,其所coatingpolymer不同,制造程序亦不同,雖對大部分細胞沒有太大之影響,惟少數細胞則可能因使用廠牌不同之dishflask而有顯著之生長差異。


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